UK Нанокомпозити срібла на основі синтетичних гумінових речовин як високоефективні стимулятори росту рослин

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Валентина Анатоліївна Литвин
Альона Володимирівна Запорожець
Інна Олександрівна Озівська

Анотація

Нанобіокомпозити, що містять срібло та синтетичні гумінові речовини, були
синтезовані у реакції відновлення йонів срібла синтетичними гуміновими речовинами,
отриманими в лабораторних умовах з кверцетину. Одержані нанокомпозити
охарактеризовані методом спектроскопії у видимій області, методом рентгенівської
дифракції, ІЧ-спектроскопії та просвічуючої електронної мікроскопії. У роботі вивчена
ростостимулююча активність синтетичних гумінових речовин з кверцитину та
нанокомпозитів срібла на їх основі. Встановлено діапазон діючих концентрацій (1·10-10 - 1·10-4
%) стимуляторів у процесі проростання насіння пшениці. Значний стимулюючий ефект
нанокомпозити срібла на основі синтетичних гумінових речовин здійснюють на ріст основного
кореня у проростків. Встановлена активність нанокомпозитів є передумовою розробки нових
високоефективних ростостимулюючих препаратів.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Розділ
Статті
Біографії авторів

Валентина Анатоліївна Литвин, Черкаський національний університет імені Богдана Хмельницького

кандидат хімічних наук, доцент
Черкаський національний університет імені Б. Хмельницького

Альона Володимирівна Запорожець , Черкаський національний університет імені Богдана Хмельницького

молодший науковий співробітник
Черкаський національний університет імені Б. Хмельницького

Інна Олександрівна Озівська , Черкаський національний університет імені Богдана Хмельницького

молодший науковий співробітник
Черкаський національний університет імені Б. Хмельницького

Посилання

Mittal D., Kaur G., Singh P., Yadav K., Ali S.A. Nanoparticle-Based Sustainable Agriculture and Food Science:

Recent Advances and Future Outlook. Front. Nanotechnol. 2020. Vol. 2. P. 579954.

Usman M., Farooq M., Wakeel A., Nawaz A., Cheema S. A., Rehman H., et al. Nanotechnology in agriculture:

current status, challenges and future opportunities. Sci. Total. Environ. 2020. Vol. 721. P. 137778.

Hojjat S. S., Kamyab M. The effect of silver nanoparticle on Fenugreek seed germination under salinity

levels. Russian. Agricult. Sci. 2017. Vol. 43. P. 61–65.

Iqbal M., Raja N. I., Hussain M., Ejaz M., Yasmeen F. Effect of silver nanoparticles on growth of wheat under

heat stress. J. Sci. Technol. Transac. A Sci. 2019. Vol. 43. P. 387–395.

Nath J., Dror I., Landa P., Vanek T., Kaplan-Ashiri I., Berkowitz B. Synthesis and characterization of

isotopically-labeled silver, copper and zinc oxide nanoparticles for tracing studies in plants. Environ. Pollut.

Vol. 242. P. 1827–1837.

Jiang H., Li M., Chang F.Y., Li W., Yin L.V. Physiological analysis of silver nanoparticles and AgNO3 toxicity

to Spirodela polyrhiza. Environ Toxicol Chem. 2012. Vol. 31 (8). P. 1880–1886.

Bewley J.D., Black M. Seeds. Springer (2nd ed.), Boston, 1994. P. 1-33.

Barrena R., Casals E., Colon J., Font X., Sanchez A., Puntes V. Evaluation of the ecotoxicity of model

nanoparticles. Chemosphere. 2009. Vol. 75. P. 850–857.

Shelar G.B., Chavan A.M. Myco-synthesis of silver nanoparticles from Trichoderma harzianum and its impact

on germination status of oil seed. Biolife. 2015. Vol. 3. P. 109–113.

Sharma P., Bhatt D., Zaidi M.G., Saradhi P.P., Khanna P.K., Arora S. Silver nanoparticle-mediated enhancement

in growth and antioxidant status of Brassica juncea. Appl. Biochem. Biotechnol. 2012. Vol. 167. P. 2225–2233.

Kaveh R., Li Y.S., Ranjbar S., Tehrani R., Brueck C.L., Van Aken B. Changes in Arabidopsis thaliana gene

expression in response to silver nanoparticles and silver ions. Environ. Sci. Technol. 2013. Vol. 47. P. 10637–

Vannini C., Domingo G., Onelli E., Prinsi B., Marsoni M., Espen L., Bracale M. Morphological and proteomic

responses of Eruca sativa exposed to silver nanoparticles or silver nitrate. PLoS One. 2013. Vol. 8. P. 6875.

Hatami M., Ghorbanpour M. Effect of nanosilver on physiological performance of pelargonium plants exposed

to dark storage. J. Hort. Res. 2013. Vol. 21. P. 15–20.

Lu C., Zhang C., Wen J., Wu G., Tao M. Research of the effect of nanometer materials on germination and

growth enhancement of Glycine max and its mechanism. Soybean Sci. 2002. Vol. 21. P. 168–171.

Anisimov M.M., Skriptsova A.V., Chaikina E.L., Klykov A.G. Effect of water extracts of seaweeds on the

growth of seedling roots of buckwheat. Int. J. Res. Rev. Appl. Sci. 2013. Vol. 16. №2. P. 282–287.

Zhigacheva I.V., Burlakova E.B., Generozova I.P., Shugaev A.G., Fattahov S.G. Ultra-low doses of melafen

affect the energy of mitochondria. J. Biophys. Structural Biology. 2010. Vol. 2. № 1. P. 001–008.

Almutairi Z.M., Alharbi A. Effect of Silver Nanoparticles on seed germination of crop plants. Int. J. Biol.,

Biomol., Agricult., Food Biotechnol. Engineering. 2015. Vol. 9. № 6. P. 551–555.

Yin L., Colman B.P., McGill B.M., Wright J.P., Bernhardt E.S. Effects of silver nanoparticle exposure on

germination and early growth of eleven wetland plants. PLoS One. 2012. Vol. 7. № 10. P. e47674.

Vannini C., Domingo G., Onelli E., Prinsi B., Marsoni M., Espen L. Morphological and proteomic responses of

Eruca sativa exposed to silver silver nanoparticles or silver nitrate. PLoS One. 2013. Vol. 8. № 7. P. e6875.

Tymoszuk A. Silver Nanoparticles Effects on In Vitro Germination, Growth, and Biochemical Activity of

Tomato, Radish, and Kale Seedlings. Materials. 2021. Vol. 14. P. 5340.

Geisler-Lee J., Wang Q., Yao Y., Zhang W., Geisler M., Li K. Phytotoxicity, accumulation and transport of

silver nanoparticles by Arabidopsis thaliana. Nanotoxicology. 2013. V. 7. № 3. P. 323–337.

Rajput V., Minkina T., Mazarji M., Shende S., Sushkova S., Mandzhieva S., Burachevskaya M., Chaplygin

V., Singh A., Jatav H. Accumulation of nanoparticles in the soil-plant systems and their effects on human health.

Annals of agricultural science. 2020. Vol. 65. №2. P. 137-143.

Litvin V.A., Derij S.I., Plakhotniuk L.M., Njoh R.A. Effects of humic substances on seed germination of wheat

under the influence of heavy metal. Cherkasy University Bulletin: Biological Sciences series. 2020. Vol. 1. P.

-52.

Canellas L. P., Olivares F. L. Physiological responses to humic substances as plant growth promoter. Chem. biol.

technol. agric. 2014. Vol. 1. No 3. P. 11.

Litvin V.A., Njoh R.A. Quercetin as a precursor in the synthesis of analogues of fulvicacids and their

antibacterial properties. Voprosy khimii i khimicheskoi tekhnologii. 2021. No. 2. P. 56-64.

Theivasanthi, T., Alagar, M. X-Ray Diffraction Studies of Copper Nanopowder. Arch. Phys. Res. 2010. Vol. 1

(2). P. 112-117.

Dolmaa G., Bаyrаа B., Uranrserseg E., Aleksandrova G.P., Lesnichaya M.B., Ganzaya G., Sukhov B.G., Regdel

D., Trofimov B.A. Influence of ultra-low doses of some biologically active substances on the germination of

wheat seeds. Pros. Mong. Acad. Scien. 2015. Vol. 1. P. 77–89.

Litvin V.A., Minaev B.F. Spectroscopy study of silver nanoparticles fabrication using synthetic humic

substances and their antimicrobial activity. Spectrochim. Acta, Part A. 2013. Vol. 108. Р. 115-122.

Anisimov M.M., Chaikina E.L., Afiyatullov S.S., Zhuravleva O.I., Klykov A.G., Kraskovskaja N.A., Aminin

D.L. Decumbenones A–C from marine fungus Aspergillus sulphureus as stimulators of the initial stages of

development of agricultural plants. Agricultural Sci. 2012. Vol. 3. № 8. P. 1019–1022.

Lei Z., Mingyu S., Xiao W., Chao L., Chunxiang Q., Liang C. Antioxidant stress is promoted by nano-anatase in

spinach chloroplasts under UV-B radiation. Biol. Trace Elem. Res. 2008. Vol. 121. P. 69–79.

Zheng L., Hong F., Lu S., Liu C. Effect of nano-TiO2 on strength of naturally aged seeds and growth of spinach.

Biol. Trace. Element. Res. 2005. Vol. 104. № 1. P. 82–93.

Farghaly F.A., Nafady N.A. Green synthesis of silver nanoparticles using leaf extract of Rosmarinus officinalis

and its effect on tomato and wheat plants. J. Agricultural Sci. 2015. Vol. 7. № 11. P. 1916–1923.